Prlvement pour hmoculture

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Prélèvement pour hémoculture
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Définition.

• Cest un acte infirmier de prélèvement
  aseptique dun échantillon sanguin en vu
  didentifier un germe à lorigine dune
  septicémie. Il permet didentifier le germe en
  cause et définir son profil de résistance ou son
  sensibilité aux antibiotiques et proposer un
  traitement efficace. Il faut à tout prix éviter
  la contamination du prélèvement par la flore
  cutanée pouvant faire incriminer à tord un germe
  commensal.

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Objectifs

• Définir et identifier le germe causal.
• Préciser lATB efficace contre le germe.

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Indications.

• Hypothermie inférieur à 36.
• Hyperthermie supérieur à 38,5.
• En cas de frissons  car décharge bactérienne
  dans le sang.

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Matériel spécifique

• Seringue stérile de 10 ml (aiguille monté avec le
  corps).
• Compresse stérile.
• Gants stériles.
• Alcool à 70.
• Bétadine.
• Plateau stérile ou désinfecté.
• Flacon dhémoculture.
• Garrot.

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Technique

• Avertir le malade et lui expliquer lintérêt du
  prélèvement.
• Fermer porte et fenêtres.
• Installer confortablement le malade, sa tête
  tournée au coté opposé du lieu de ponction.
• Repérer la veine à ponctionner.
• Laver, rincer et sécher le lieu de ponction (si
  nécessaire).
• Réaliser un lavage hygiénique des mains à laide
  dun savon antiseptique pendant au moins 1
  minute.
• Badigeonner le lieu de prélèvement avec Bétadine
  du centre à la périphérie.
• Respecter le temps de contact de la Bétadine (au
  moins 1 minute).
• Eviter de palper la veine après désinfection.
• Mettre un garrot propre à usage unique (si
  prélèvement à partir du cathéter centrale ou la
  chambre implantable, utiliser des gants
  stériles).

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• La ponction doit être franche.
• Prélever la quantité adéquate du sang (5 à 10 ml
  chez ladulte et 2 à 5 ml chez lenfant) sans
  aspirer lair.
• Après le prélèvement, laiguille est retirée sans
  appliquer du coton sur elle (risque de
  contamination de laiguille), le tamponnement de
  la veine sera fait par la suite.
• Si le prélèvement est destiné à plusieurs
  examens, ensemencer le flacon dhémoculture en
  premier.
• Ensemencer le sang prélevé dans le flacon en
  piquant à travers le bouchon pré-désinfecté.
• Mélanger doucement.
• Jeter laiguille souillée dans le contenaire
  réservé aux objets piquants et tranchants.
• Terminer par un pansement sur le lieu de
  ponction.
• Acheminement immédiat du prélèvement vers le
  laboratoire de microbiologie. Le prélèvement ne
  doit être gardé au service que si ce dernier
  dispose dune étuve à 37c.
• Faire 2 ou 3 hémoculture par 24 heures à un
  intervalle de 30 à 60 minutes.

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• Remarque importante
• 2 à 3 hémocultures doivent être systématiquement
  pratiquées à chaque épisode fébrile, les chances
  de mise en évidence dun germe augmentent avec la
  multiplication des hémocultures.
• En cas de cathéter central  il convient de
  pratiquer des hémocultures par prélèvement
  périphérique et au niveau du cathéter central.