PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS AL LABORATORIO

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PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS AL
LABORATORIO
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RECOMENDACIONES GENERALES

• Se deben escoger para la toma de la muestra los
  animales con estados mas avanzados de la
  enfermedad.
• En animales muertos deben tomarse las muestras lo
  mas rápido posible (máximo 1 hora).
• las muestras para estudio bacteriológico o viral
  deben tomarse siempre en material estéril, antes
  de la administración de medicamentos, y antes de
  las muestras de histopatología o parasitología.
• Para la recolección de cualquier tipo de muestra
  se debe utilizar material adecuado para su
  transporte, limpio y seco.

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RECOMENDACIONES GENERALES

• Recuerde que entre mas rápido llegue la muestra
  al laboratorio, mas confiable será el resultado.
• Las muestras deben ir perfectamente
  identificadas y acompañadas de la anamnesis o de
  la historia clínica del animal.
• Los resultados que emite el laboratorio NO son
  diagnósticos definitivos de una enfermedad. Se
  deben comparar siempre estos con la historia
  clínica y la epidemiología del caso para llegar
  a una conclusión final.

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EMPAQUE Y ENVIO

• El medio ideal para la conservación es el hielo
  natural, hielo seco, o gel refrigerante en fundas
  herméticas.
• Se recomienda la utilización de neveras de icopor
  para su facilidad en el transporte.
• Las muestras deben ir en recipientes individuales
  y bien identificadas, colocandolas sobre un
  material o recipiente que amortigüe los golpes.
• La información que acompaña las muestras se envía
  debidamente protegida.
• Se debe pedir información previa al laboratorio
  sobre los materiales y la forma de envío de cada
  una de las muestras.

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MUESTRAS DE LECHE

• PARA ESTUDIO MICROBIOLOGICO
• Materiales
• Frasco o tubo estéril.
• Desinfectante.
• Procedimiento
• Lavar y secar la ubre.
• Desinfectarse las manos.
• Desinfectar las ubres de las vacas y dejar secar.
• Eliminar los primeros quince chorros de leche.
• Llenar el recipiente, marcarlo y refrigerar la
  muestra.
• NOTA La toma de la muestra se puede por medio
  de un pool o por cuartos afectados.

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MUESTRAS DE HERIDAS ABIERTAS Y EXUDADOS

• Materiales
• Frasco o tubo estéril.
• Desinfectante.
• Isopo estéril.
• Medio de transporte (3 ml de solución salina al
  0.9).
• Procedimiento
• Lavar y secar la zona.
• Raspar la zona afectada con un isopo.
• Introducir el isopo en el medio de transporte y
  quebrar la parte superior del mismo.
• Tapar el tubo, marcarlo y refrigerar.

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MUESTRAS DE ORGANOS Y TEJIDOS

• Materiales
• Frasco estéril de boca ancha.
• Procedimiento
• La recolección se realiza con asepsia y máximo
  dos horas después de la muerte del animal.
• Sin tocar el lugar de la lesión se cortan trozos
  de tejido u órgano de 3x3 cm, tomando áreas con
  lesión y áreas normales.
• Depositar la muestra en un frasco estéril.
• Tapar el frasco, marcarlo y refrigerar.
• Para muestras de histopatología se debe utilizar
  un frasco con una solución de formol al 10.

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MUESTRAS DE EXUDADO PREPUCIAL

• Materiales
• Jeringa.
• Solución salina estéril.
• Recipiente o tubo estéril.
• Procedimiento
• Depilar, lavar con agua jabón toda el área
  externa, verificando que el orificio externo del
  prepucio se mantenga seco.
• Introducir una pipeta de plástico conectada a una
  jeringa que contenga 30mm de solución salina,
  masajear de abajo hacia arriba por espacio de 15
  minutos.
• Atar el orificio externo del prepucio con una
  liga de caucho y aspirar el lavado al interior de
  la jeringa.
• Pasar la muestra a un tubo estéril o sellar la
  jeringa.
• Identificar la muestra y refrigerarla. (si no es
  llevada en 2 horas al laboratorio)

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MUESTRAS DE SEMEN

• Materiales
• Electroeyaculador o vagina artificial
• Recomendaciones
• La estimulación manual de los órganos genitales
  es la metodología recomendada para la obtención
  del semen.
• El procedimiento se realiza por medio de la
  palpación rectal estimulando la próstata, las
  vesículas seminales y la raíz del pene.
• Los frascos utilizados para la recolección deben
  estar estériles y sin ningún preservante.
• La muestra debe estar en refrigeración y se debe
  procesar lo mas rápido posible (máximo 2 horas)

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MUESTRAS DE VAGINA

• Materiales
• Isopo estéril
• Solución salina estéril (medio de transporte).
• Recipiente o tubo estéril
• Especulo vaginal
• Procedimiento
• Introducir en el canal vaginal el especulo
  estéril
• realizar el barrido del contenido o de la
  secreción vaginal con el isopo
• Introducir el isopo en el medio de transporte y
  quebrar la parte superior del mismo.
• Tapar el tubo, marcarlo y refrigerar.

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MUESTRAS DE HECES FECALES

• Materiales
• Guantes de palpación.
• Procedimiento
• Introducir la mano en el recto del animal y
  estimular el esfínter anal.
• Obtener de 20 a 40 gramos.
• Reversar el guante hacia adentro.
• Identificar la muestra y Mantener en refrigeración

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MUESTRAS DE SANGRE

• Materiales
• Vacutainer y camisa
• En caso de no tener vacutainer se puede usar
  jeringa con agujas de calibre 14 -18
• Tubo con anticoagulante (Heparina, EDTA)
• Procedimiento
• Desinfectar con alcohol el área donde se va a
  realizar la extracción de la sangre
• La extracción puede realizarse en la vena
  yugular, coxigea, ventral o subcutánea.
• Una ves realizada la extracción agitar
  suavemente el tubo, marcarlo y refrigerarlo.

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MUESTRAS DE SUERO

• Materiales
• Vacutainer y camisa
• En caso de no tener vacutainer se puede usar
  jeringa con agujas de calibre 14 -18
• Tubo sin anticoagulante
• Observaciones
• Una ves se extrae la muestra, los tubos se
  inclinan y se dejan al medio ambiente para que el
  coagulo se retraiga adecuadamente.
• El tubo debe estar seco al momento de la muestra
  para evitar la hemolisis de la sangre.

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MUESTRAS DE ORINA

• MICCION ESPONTANEA
• Dicha técnica es solamente para los machos
• Atar una bolsa, de hule o de caucho limpia y
  estéril, de manera que su abertura coincida con
  el orificio uretral.
• Después dela micción pasar la muestra un
  recipiente estéril.
• Identificar y enviar al laboratorio en estado de
  refrigeración

• SONDEO VESICAL
• Dicha técnica se aplica para las hembras de la
  mayoría de las especies
• la sonda debe estar estéril, al igual que su
  lubricante, con el fin de evitar infecciones
  ascendentes.

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MUESTRAS PARA VIROLOGIA
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MUESTRAS PARA TOXICOLOGIA

• RECOMENDACIONES
• Historia clínica Drogas, signos clínicos,
  hallazgos epidemiológicos.
• Determinar el tipo de examen o tóxico a analizar.
• Tejidos o líquidos, deben conservarse en
  refrigeración Evita el aumento de microbios y
  conserva las sales.
• Conservación química en etanol al 95 (1ml x gr
  de muestra).
• No usa formol ni frascos con tapas metálicas.

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MUESTRAS PARA AGUA

• Materiales
• Frascos estériles.
• Procedimiento
• Se flamea la boca de la canilla por 30 segundos.
• Se deja correr el agua por igual cantidad de
  tiempo.
• Se llenan las tres cuartas partes del frasco.
• Se marca y se refrigera.
• Recomendaciones
• Los frascos para aguas tratadas se les adiciona
  una solución de tiosulfito de sodio al 0.1N.

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FUNCION PANCREATICA

• PANCREAS
• Función endocrina Producción de insulina -
  Glucosa a través de membranas celulares
• Función exocrina Libera jugo pancreático
  enzimas
• 
  
• Enzimas
• Amilasa Suero
• Lipasa Suero
• Tripsina Fecal en perros y gatos.
• Glucosa Sangre entera y suero.

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FUNCION RENAL

• RIÑON
• Se miden sustancias químicas que normalmente se
  encuentran en la sangre y se excretan por el
  riñón.
• Cuando hay daño en el riñón, estas sustancias se
  aumentan.
• Sustancias
• BUN o NU Nitrógeno Ureico 50
• NNP Nitrógeno no proteico 50
• CREATININA Producto final del metabolismo del
  músculo

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FUNCION HEPATICA

• HIGADO
• Tiene mas de 500 funciones en el organismo.
• Las sustancias que secreta se encuentran en
  sangre, orina y heces.
• Sustancias
• SGOT Transaminasa glutamico-oxalacetica del
  suero
• SGPT Transaminasa glutamico piruvica del suero
• En bovinos se encuentra el SGOT en miocardio,
  hígado,músculo esquelético.
• SGOT AUMENTADO Enfermedad del músculo blanco
  deficiencia de vitamina E y selenio.